DNA轉染是一種重要的實驗技術，在基因研究和基因治療等領域發揮著重要作用，外源DNA/RNA不整合到宿主染色體中，因此一個宿主細胞中可存在多個拷貝數，產生高水平的表達，但通常只持續幾天，多用于啟動子和其它調控元件的分析；外源性DNA既可以整合至細胞染色體，也可以作為游離體(episome)存在。盡管線性DNA比超螺旋DNA轉入量低但整合率高。外源性DNA整合至染色體中概率很小，大約1/104轉染細胞能整合，通常需要通過一些選擇性標記反復篩選，以得到穩定轉染的同源細胞系。
 

　　DNA轉染的使用注意事項：
 

　　1.細胞狀態：選擇傳代次數較低并處于對數生長期的細胞進行轉染，確保細胞生長旺盛，容易轉染。細胞狀態不好會導致轉染效率低下。
 

　　2.轉染試劑：不同的細胞類型和實驗條件可能需要不同的轉染試劑和優化條件。應根據實驗室的具體條件來確定轉染條件。
 

　　3.DNA質量：用于轉染的質粒DNA必須無蛋白質、RNA和其他化學物質的污染。同時，確保質粒OD值A260/A280比值應在1.8以上，以保證DNA的純度。
 

　　4.培養基血清：在開始準備DNA和陽離子脂質體試劑稀釋液時使用無血清的培養基。因為血清會影響復合物的形成。但陽離子脂質體和DNA-陽離子脂質體試劑的復合物在形成時，對血清的存在不太敏感。
 

　　5.抗生素使用：在轉染培養基中不能使用抗生素，因為抗生素會降低細胞的活性，導致轉染效率低。對于穩定轉染，在篩選抗生素加入前至少要留出24-48h。
 

　　DNA轉染的測定步驟涉及多個環節，每一步都需要仔細操作以確保實驗的準確性和可靠性。同時，在使用該技術時還需要注意多個方面，遵循這些注意事項可以提高轉染效率、減少細胞損傷并確保實驗結果的準確性和可重復性。